高致病性猪蓝耳病的流行现状与防控.ppt

******************************2010年其他省份JXA1-R株使用情况省份2010年（万头份）省份2010年（万头份）河南4051.5天津2.708辽宁12.6海南35四川1533.6甘肃0.04新疆545河北43.9北京36.2福建411.4宁夏120.05上海92.1875浙江576.08黑龙江0.4内蒙古128.5广西400重庆413.874吉林300.3山东653.83青海省10陕西70.5山西150合计9587.67第31页,共43页，星期六，2024年，5月高致病性猪蓝耳病的诊断、

鉴别诊断和免疫效果评价1欧洲型PRRSV与美洲型PRRSV的鉴别诊断PRRS病毒分为欧洲型与美洲型，目前在我国均有检出。因此，在检测结果为PRRS病毒阳性时，有必要对样品用能鉴别欧洲型PRRSV与美洲型PRRSV的荧光RT-PCR方法进一步做鉴别诊断。第32页,共43页，星期六，2024年，5月2经典PRRSV与HP-PRRSV的鉴别诊断目前我国主要流行的PRRSV为美洲型，但美洲型毒株又可分为以1996年在我国分离的CH-1a株为代表的经典PRRSV毒株和以2006年分离的HP-PRRSVJXA1株为代表的HP-PRRSV毒株。因此，在检测结果为美洲型PRRSV阳性时，有必要对样品用能鉴别经典PRRSV与HP-PRRSV的荧光RT-PCR鉴别诊断试剂盒进行检测。第33页,共43页，星期六，2024年，5月3HP-PRRSV与JXA1-R株疫苗的鉴别诊断在高致病性猪蓝耳病活疫苗（JXA1-R株）应用于临床前，采用针对PRRSV（Nsp21594~1680变异株）的RT-PCR方法即可进行高致病性猪蓝耳病活疫苗（JXA1-R株）的分子流行病学调查，但活疫苗应用于临床后，因疫苗毒也具有Nsp21594~1680变异株的特征，因此只有建立一种能针对疫苗毒的鉴别检验方法，才能将临床流行毒株与疫苗毒区分开来。针对高致病性猪蓝耳病活疫苗（JXA1-R株）建立的荧光RT-PCR诊断方法可用于该疫苗（JXA1-R株）与包括HP-PRRSV野毒在内的其他所有PRRS病毒的鉴别诊断。第34页,共43页，星期六，2024年，5月4疫苗免疫效果评价—血清抗体检测美国IDEXX公司生产的PRRSVELISA抗体检测试剂盒，检测N蛋白抗体，阳性值出现早，消失快。因此，该试剂盒主要用于PRRSV感染后的早期诊断。法国LSI公司生产的PRRSVELISA试剂盒，检测糖蛋白抗体，阳性值出现较晚，持续时间可达5个月以上。因此，可用于疫苗免疫后的效果评价。第35页,共43页，星期六，2024年，5月高致病性猪蓝耳病的综合防控措施从2009~2010年高致病性猪蓝耳病疫情走势来看，疫情范围显著缩小，流行强度明显减弱，但病毒毒力依然很强，污染面仍然很广；2009~2010分离的30株HP-PRRSV经全基因序列测定和致病性实验证明，与2006年HP-PRRSV分离株JXA1株相比具有很高的同源性，且均为高致病性毒株；2010年高致病性猪蓝耳病疫情在一些地区可能呈点状爆发和散发，因此仍然是防控的重点。实验证明高致病性猪蓝耳病活疫苗（JXA1-R株）免疫后能抵御2009年流行的HP-PRRSV强毒株的攻击，因此，高致病性猪蓝耳病是可防、可控的。第36页,共43页，星期六，2024年，5月高致病性猪蓝耳病的综合防控措施从目前养猪业的现状来看，可以说高致病性猪蓝耳病是造成我国猪病复杂而严重的罪魁祸首，猪蓝耳病病毒先感染肺部巨噬细胞，进而扩散至全身的单核细胞和组织巨噬细胞，从而破坏了猪的免疫功能，降低了猪的抵抗力，使猪易继发多种致病病原，提高了死亡率，也造成了猪病复杂、严重和难于进行临床诊断等现实问题。从我们在动物实验过程中看到的实验对照组临床症状和剖检病变，最易发生的继发感染主要为副猪嗜血杆菌等病原体，这也是在临床上保育和育肥前期最常见的疾病，因此可以说解决我国猪病复杂而严重的问题，核心是在保证猪瘟等正常免疫的基础上做好高致病性猪蓝耳病的防控。第37页,共43页，星期六，2024年，5月高致病性猪蓝耳病的综合防控措施从文献报道和我们的动物实验结果来看，猪蓝耳病的免疫具有明显的毒株相关特点。也就是说，疫苗毒所诱导的免疫能够抵御与其相对应的强毒的感染，但交叉保护与其