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细胞生物学常用技术2024-01-27

目录contents显微镜技术细胞培养技术细胞分离技术细胞转染与基因编辑技术细胞成像技术细胞生物学常用试剂盒方法

CHAPTER显微镜技术01

利用光线直接照射样品，通过物镜和目镜的放大作用观察细胞形态和结构。明视野显微镜暗视野显微镜相差显微镜利用特殊的光学系统，使样品在暗背景下呈现明亮的像，适用于观察透明和半透明样品。利用光的干涉原理，将透过样品的光程差转换为振幅差，从而观察无色透明的活细胞。030201光学显微镜

利用高能电子束穿透样品，通过电磁透镜成像，可观察细胞超微结构。透射电子显微镜利用电子束扫描样品表面，通过接收样品反射的次级电子成像，适用于观察细胞表面形貌。扫描电子显微镜电子显微镜

利用激光作为光源，通过共聚焦技术实现高分辨率成像，可观察活细胞的动态过程。共聚焦原理采用多光子激发技术，降低光毒性，实现对活细胞的无损观察。多光子激发通过逐层扫描样品，获取三维图像数据，可进行细胞的三维重建和分析。三维重建激光共聚焦显微镜

CHAPTER细胞培养技术02

细胞接种将解离后的细胞接种到适当的培养基中，提供适宜的生长条件。组织解离通过机械或化学方法将组织分散成单个细胞。细胞增殖与分化细胞在培养基中增殖并逐渐分化成具有特定功能的细胞类型。原代细胞培养

通过连续传代培养，筛选出具有稳定生长特性和特定功能的细胞株。细胞系的建立在特定的培养基和条件下，保持细胞系的稳定生长和遗传特性。细胞系的维持用于研究细胞生物学、药物筛选和细胞工程等领域。细胞系的应用细胞系培养

三维细胞培养细胞聚集体培养通过使细胞在三维空间中聚集形成类似组织的结构。生物材料支架培养利用生物相容性材料构建三维支架，为细胞提供生长和分化的空间结构。微流控芯片培养利用微流控技术构建细胞生长的三维微环境，实现细胞的高通量培养和实时监测。

CHAPTER细胞分离技术03

利用流式细胞仪对细胞进行快速、自动、多参数的定量分析和分选。原理细胞周期分析、细胞凋亡检测、免疫细胞分选等。应用高通量、高灵敏度、多参数分析。优点流式细胞术

03优点高纯度、高回收率、操作简便。01原理利用磁珠与特定细胞表面标志物的特异性结合，通过磁场作用实现细胞分离。02应用免疫细胞分选、肿瘤细胞分离等。磁珠分选技术

原理利用激光束对组织切片进行精确切割，获取目标细胞群体。应用肿瘤异质性研究、单细胞分析等。优点高精度、高分辨率、无损伤。激光捕获显微切割技术

CHAPTER细胞转染与基因编辑技术04

原理优点缺点应用脂质体转染法利用脂质体包裹DNA，通过细胞的内吞作用将DNA导入细胞。对细胞有一定毒性，需要优化转染条件以降低毒性。操作简便，适用于多种细胞类型，转染效率高。基因功能研究、基因表达调控、基因治疗等。

电穿孔法利用高压脉冲电场在细胞膜上形成暂时的孔洞，使DNA能够进入细胞。适用于各种细胞类型，包括难转染的细胞，转染效率高。需要专门的电转仪，操作相对复杂，对细胞有一定损伤。基因功能研究、基因表达调控、细胞治疗等。原理优点缺点应用

利用CRISPR/Cas9系统对目标基因进行定点切割，引发细胞自身的DNA修复机制，从而实现基因编辑。原理优点缺点应用操作简便，编辑效率高，可实现多基因同时编辑。可能存在脱靶效应，对细胞有一定毒性。基因功能研究、基因治疗、遗传疾病模型构建等。CRISPR/Cas9基因编辑技术

CHAPTER细胞成像技术05

123利用荧光染料特异性标记细胞或细胞器，通过荧光显微镜观察细胞结构和动态过程。荧光染料标记利用荧光染料之间的能量转移现象，研究细胞内分子间的相互作用和信号传导。荧光共振能量转移（FRET）结合多种荧光染料，同时观察多种细胞组分或分子，揭示它们在细胞内的空间分布和相互作用。多色荧光成像荧光显微镜成像

利用共聚焦显微镜的光学切片能力，获取细胞内部不同层面的清晰图像，研究细胞的三维结构。光学切片结合荧光染料和共聚焦显微镜，实时观察活细胞内分子和细胞器的动态变化，揭示细胞生理过程的时空特征。活细胞成像整合共聚焦显微镜与其他成像技术，如电子显微镜、拉曼光谱等，实现多模态、多尺度的细胞成像分析。多模态成像共聚焦显微镜成像

结构光照明显微镜（SIM）01利用结构光照明技术提高图像的分辨率和对比度，揭示细胞内部更精细的结构。受激发射损耗显微镜（STED）02通过受激发射损耗原理突破光学显微镜的分辨率极限，实现纳米级别的超分辨率成像。单分子定位显微镜（SMLM）03利用单分子定位技术，如光激活定位显微镜（PALM）和随机光学重建显微镜（STORM），实现单分子水平的超分辨率成像，揭示细胞内分子的精细分布和动态变化。超分辨率显微镜成像

CHAPTER细胞生物学常用试剂盒方法06

原理适用于各种细胞类型和样本，包括细胞系、原代细胞和组织样本