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荧光定量PCR原理介绍
汇报人:XX
2024-01-16
目录
contents
荧光定量PCR概述
荧光定量PCR基本原理
荧光定量PCR实验流程
荧光定量PCR数据分析方法
荧光定量PCR技术应用实例
荧光定量PCR技术挑战与展望
01
荧光定量PCR概述
荧光定量PCR(Real-timeFluorescentQuantitativePCR,简称RT-qPCR)是一种在PCR扩增过程中,通过荧光信号实时监测PCR产物量的技术。
自1992年Higuchi首次提出实时荧光定量PCR技术以来,该技术经历了不断完善和发展的过程,现已成为分子生物学研究中不可或缺的工具。
发展历程
定义
技术特点
荧光定量PCR技术利用荧光基团标记的特异性引物或探针,在PCR扩增过程中实时监测荧光信号的变化,从而实现对目标基因表达的定量分析。
优势
与传统的PCR技术相比,荧光定量PCR具有更高的灵敏度、特异性和准确性,能够实现对目标基因表达的精确定量分析,同时避免了传统PCR技术中可能出现的假阳性和假阴性结果。
02
荧光定量PCR基本原理
聚合酶链式反应(PCR)
PCR是一种分子生物学技术,通过特定的引物和DNA聚合酶,将特定的DNA片段在体外进行快速、特异的扩增。
PCR反应过程
PCR反应包括三个基本步骤,即退火、延伸和变性,通过循环这三个步骤,实现DNA片段的指数级扩增。
荧光染料是一种能够结合到DNA双链上并发出荧光的化学物质,如SYBRGreen等。当染料结合到DNA双链上时,其荧光信号会显著增强。
荧光染料
荧光探针是一种特异的寡核苷酸,其两端分别标记有荧光基团和淬灭基团。当探针完整时,荧光基团和淬灭基团相互接近,荧光信号被淬灭。而在PCR扩增过程中,探针被特异性地切割,使得荧光基团和淬灭基团分离,从而产生荧光信号。
荧光探针
实时荧光检测系统
实时荧光检测系统能够实时监测PCR反应过程中的荧光信号变化。通过检测荧光信号的强度和变化速率,可以对PCR产物进行定性和定量分析。
数据分析方法
数据分析方法包括标准曲线法、比较Ct法等。标准曲线法是通过构建已知浓度的标准品与Ct值之间的线性关系,对未知样品进行定量分析。比较Ct法则是通过比较待测样品与参照样品之间的Ct值差异,对待测样品进行相对定量分析。
03
荧光定量PCR实验流程
收集待测样品,如细胞、组织、血液等,并进行适当处理以获得高质量的DNA。
样品准备
使用合适的DNA提取方法,如酚氯仿法、试剂盒法等,从样品中提取出DNA。提取过程中应避免DNA降解和污染。
DNA提取
VS
根据目标DNA序列,设计特异性引物。引物长度通常在18-24bp之间,GC含量适中,避免引物自身互补和形成二级结构。同时,引物序列应避免与非目标序列产生非特异性扩增。
引物合成
将设计好的引物序列送至专业合成公司进行合成。合成后的引物需进行纯化和质量检测,以确保其质量和特异性。
引物设计
PCR反应体系配制
按照一定比例将DNA模板、引物、dNTPs、PCR缓冲液、荧光染料或荧光探针等组分混合,配制PCR反应体系。其中,荧光染料或荧光探针的选择应根据实验需求和目标DNA序列的特点进行。
PCR扩增
将配制好的PCR反应体系放入PCR仪中,设置合适的扩增程序(包括预变性、变性、退火和延伸等步骤)进行PCR扩增。在扩增过程中,荧光信号被实时监测并记录。
荧光信号分析
通过专业软件对收集到的荧光信号进行分析和处理,得到目标DNA序列的定量结果。常见的分析方法包括绝对定量和相对定量两种。绝对定量是通过与已知浓度的标准品进行比较来确定样品中目标DNA的浓度;相对定量则是通过比较不同样品间目标DNA与内参基因的表达量差异来评估基因表达水平的变化。
04
荧光定量PCR数据分析方法
通过构建已知浓度的标准品,建立荧光信号与DNA浓度的标准曲线,从而根据未知样品的荧光信号强度推算出其DNA浓度。
首先构建一系列已知浓度的标准品,并进行荧光定量PCR扩增。以标准品的浓度为横坐标,荧光信号强度为纵坐标,绘制标准曲线。然后根据未知样品的荧光信号强度,在标准曲线上找到对应的DNA浓度。
原理
步骤
原理
通过比较目标基因与内参基因(或对照基因)的荧光信号强度比值,来反映目标基因的相对表达量。这种方法可以消除实验过程中的误差,如RNA提取、反转录和PCR扩增等步骤的效率差异。
要点一
要点二
步骤
首先选择适当的内参基因,并进行荧光定量PCR扩增。然后分别计算目标基因和内参基因的荧光信号强度(Ct值),并计算两者的差值(ΔCt)。最后比较不同样品间ΔCt的差异,得出目标基因的相对表达量。
原理
通过构建已知浓度的目标基因标准品,建立荧光信号与DNA浓度的绝对定量标准曲线。然后根据未知样品的荧光信号强度,在标准曲线上
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