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山西医科大学硕士学位论文
视。本实验中,将对NOS在结肠黏膜以及黏膜下层中的表达进行研究,以进~步探索其在
重要的炎症介质,参与机体多种生物学效应,对肝硬化患者高动力循环的形成和维持有重
要作用。本实验对血清TNF.Q含量进行测定,以明确氯沙坦对血清TNF.Q含量有无影响,
进一步探索氯沙坦对PHC的治疗机制。
2
材料与方法
1实验动物
成年雄性Wistar大鼠92只,体重200.2509,购于山西医科大学实验动物中心。
2主要试剂和仪器
2.1四氯化碳(CCL4):天津化学试剂厂产品。
2.2氯沙坦: C科素亚)杭州默沙东制药有限公司。 ‘
2.3诱导型一氧化氮合酶(iNOS)免疫组化试剂盒:北京中杉生物技术有限公司。
2.4内皮型一氧化氮合酶(eNOS)免疫组化试剂盒:北京中杉生物技术有限公司。
2.5肿瘤坏死因子(TNF.a)放免测定试剂盒:北京普尔伟业生物科技有限公司。
2.6一氧化氮试剂盒:南京建成生物工程研究所。
2.7B12000计算机图像分析系统:成都泰盟科技有限公司。
2.8JEM.100CX透射电镜:山西医科大学电镜室。
2.9BIAl0生物机能实验系统:成都泰盟科技有限公司。
2.10
Uu2102C型分光光度计:尤尼柯(上海)仪器有限公司。。
2.11OLYMPUS
BH.2显微照相系统:日本奥林巴斯光学工业株式会社。
3实验动物分组及标本预处理
3.1动物模型的制备
采用复合因素法制备大鼠肝硬化模型113l:试验第一天,皮下注射60%CCl4油溶液,
按0.5ml/1009体重计算,以后每隔3
重计算。饲料前两周为79.5%玉米面,20%猪油,0.5%胆固醇混和饲料,从第三周起改为
99.5%玉米面,0.5%胆固醇。10%酒精为其唯一饮料,造模时间持续8周,明确门脉高形
成后,在治疗期间继续致病因素干扰3周。
3.2实验动物分组及用药方法
组,采用普通饮食,余76只大鼠采用复合因素法制作肝硬化模型,造模期间大鼠死亡23
肝脏右叶组织经10%甲醛固定,常规石蜡包埋。肝脏病理切片用HE染色,观察各期的肝
脏病变,明确造模成功与否,有无门脉高压形成。
药物溶解于蒸馏水中,按lml/1009体晕灌I’』,lr常对照组、模型对照组以等量蒸馏水灌胃。
灌胃时间为早8:oo,治疗时间为3周。;们,结束后进行各项指标的测定。用药期例模型
山西医科大学硕士学位论文
对照组、治疗组继续采用复合因素法的致病因素干预。
3.2测压及标本采集
3.2.1测压步骤
治疗结束后,正常对照组无死亡,模型对照组死亡3只,高剂量治疗组死亡1只,低
体重剂量麻醉。右颈部正中切口,钝性分离皮下组织,于气管旁分离右颈总动脉,分离迷
走神经,后行右颈总动脉插管测量平均动脉压(MAP)。肝静脉压测量由专人操作,参考
套管测量法【14】,上腹正中切口,游离肝静脉,用套管针刺入肝静脉一分支中,退出针头,
将一细导管通过先行插入的大导管插入肝静脉分支,继续插管至肝静脉-d,分支中,待压
HVPG数据弃之不用,停止操作迅速用血管夹夹闭止血,进行以下操作。
3.2.2标本留取预处理
取各组降结肠组织以10%甲醛固定,常规石蜡包埋。另取模型对照组、正常对照组、
高剂量治疗组结肠组织,用2%戊二醛固定两小时,放入0.1mol/L二甲砷酸钠缓冲液内,
℃保存。
4检测方法及步骤
4.1HE染色及图像分析
结肠组织常规包埋,劬m病理切片后用HE染色,观察各期的结肠黏膜的变化,同时
观察氯沙坦治疗组结肠黏膜病变有无改善,·并用图像分析系统分析黏膜下微静脉面积、单
个毛细血管内表面面积。光镜下随机测量每张标本每个视野中5条微静脉的长径及短径分
别取其平均值,用这两个数的乘积表示微静脉扩张程度的量化指标;每张标本随机抽取5
个毛细血管,分别测量其内表面面积,取其平均值作为该标本毛细血管扩张程度的量化指
标。
4.2免疫组化染色
蒸馏水冲洗后,PBS液浸泡5分钟,使用微波炉修复:将玻片置入0.01m枸橼酸溶液中,在
微波炉中加热至沸腾后,停止加热,静置10分钟,后继续加热到沸腾
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