生物药物析与检验 电泳分析法.ppt

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生物药物析与检验 电泳分析法

当把试样从阳极端注入到毛细管内时,不同电性的粒子将按不同的速度向负极迁移,从负极端先后流出毛细管。出峰次序是: 阳离子中性分子阴离子 中性分子与电渗流速度相同,不能互相分离。 v=μE=(μ电渗流±μep)E * ν+ =ν电渗流 + ν+ep 阳离子运动方向与电渗流一致; ν- =ν电渗流 - ν-ep 阴离子运动方向与电渗流相反; ν0 =ν电渗流 中性粒子运动方向与电渗流一致; ①电渗流具有像HPLC中泵一样的作用,推动离子前进,加上不同离子电泳速度和方向的差异,完成阳离子、阴离子和中性离子的分离。 ②改变电渗流的大小和方向,可以改变分离效率和选择性。这是HPCE中优化分离的重要因素。 电渗流在HPCE 的分离中起着极其重要的作用: ③电渗流的微小变化影响分离结果的重现性(迁移时间和峰面积) 。 电泳中影响电渗流的因素很多,应设法控制电渗流的恒定。 * 三、HPCE中影响电渗流的因素 1.电场强度的影响 电渗流速度和电场强度成正比,当毛细管长度一定时,电渗流速度正比于工作电压。 2.毛细管材料的影响 酸度影响毛细管的表面Si-OH基的电离,特别是在pH4~7范围内,影响更显著,此时溶液pH值与EOF成近线性关系 * 3. 电解质溶液性质的影响 (1)溶液pH的影响 对于石英毛细管,溶液pH增高时,表面电离多,电荷密度增加,管壁zeta电势增大,电渗流增大,pH=7,达到最大; pH3,完全被氢离子中和,表面电中性,电渗流为零。分析时,采用缓冲溶液来保持pH稳定。 (2)缓冲液阴离子的影响 在其他条件相同,浓度相同而阴离子不同时,毛细管中的电流有较大差别,产生的焦耳热不同。 * 缓冲溶液离子强度,影响双电层的厚度、溶液粘度和工作电流,明显影响电渗流大小。缓冲溶液浓度增加,离子强度增加,电渗流下降。 (3)缓冲液浓度(离子强度)的影响 * * 4. 温度的影响 毛细管内温度的升高,使溶液的粘度下降,电渗流增大。 温度变化来自于“焦耳热” 焦耳热:毛细管溶液中有电流通过时,产生的热量; HPCE中的焦耳热与背景电解质的摩尔电导、浓度及电场强度成正比。 温度每变化1度,将引起背景电解质溶液粘度变化2%~3%; * 5. 添加剂的影响 (1)加入浓度较大的中性盐,如K2SO4,溶液离子强度增大,电渗流减小。 (2)加入表面活性剂,可改变电渗流的大小和方向 某些阳离子表面活性剂使电渗流减小,某些阴离子表面活性剂,如十二烷基硫酸钠(SDS),可以使壁表面负电荷增加,电渗流增大 (3)加入有机溶剂如甲醇、乙腈,使溶液的粘度减小,电渗流增大。 * 第三节 毛细管电泳仪 毛细管电泳仪结构比高效液相色谱仪 简单。CE只需高压直流电源、进样装置、毛细管和检测器等。前三个部件均易实现, 困难之处在于检测器。 * * HPCE仪器流程与主要部件 process and main assembly 电压:0~30kV; 分离柱不涂敷任何固定液; 紫外或激光诱导荧光检测器; (可检测到:10-19~10-21 mol/L) * 1.高压电源 (1)0~30 kV 稳定、连续可调的直流电源; (2)具有恒压、恒流、恒功率输出; (3)电场强度程序控制系统; (4)电压稳定性:0.1%; (5)电源极性易转换; 2. 毛细管柱 (1)材料:石英 (2)规格:内径20~75μm,外径350~400μm;长度=1m * 3.缓冲液池 化学惰性,机械稳定性好; 4. 检测器 要求:具有极高灵敏度,可柱端检测; 检测器、数据采集与计算机数据处理一体化; 类型 检测限/mol 特点 紫外-可见 10-13~10-15 加二极管阵列,光谱信息 荧光 10-15~10-17 灵敏度高,样品需衍生 激光诱导荧光 10-18~10-20 灵敏度极高,样品需衍生 电导 10-18~10-19 离子灵敏,需专用的装置; * 第四节 分离模式及其分离条件的选择 4.1、毛细管区带电泳(CZE) 毛细管区带电泳也称为自由溶液溶液区带电泳, 这种电泳模式的特征是整个系统都用同一种缓冲溶液充满,带电粒子的迁移速度是电泳和电渗流速度的矢量和。 分离原理 阳离子:两种效应的运动方向一致,在负极最先流出。 中性粒子:无电泳现象,随电渗流同行,在阳离子后流出。但不同结构的中性分子无法相互分离。 *

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