第八章 动物实验的基本方法教学讲义.ppt

第八章 动物实验的基本操作技术;遵循动物保护、保证动物福利的原则 不造成动物的应激反应和伤害 不造成动物实验人员自身的伤害 确保实验结果的准确可靠;第一节 实验动物的抓取和固定 ;Placing a mouse on a cage lid and grasping the loose skin behind the ears by the thumb and forefinger;Push the mouse into the restrainer;Leave the tail of the mouse outside the cover of the restrainer;;Stretch the body of the rat by pulling up it’s tail and then cover the rat with a towel by your left hand;Grasp up the left hindlimb of the rat to expose the abdomen;;二、豚鼠的抓取与固定 ;三、家兔的抓取与固定 抓取方法 徒手固定 固定方法 盒式固定 台式固定 ;四、犬的抓取与固定 抓取方法 固定方法 慢性试验中犬的固定方法 急性试验中犬的固定方法 头部的固定 四肢固定 ;第二节 性别鉴定;Sexing mice - The distance between the anal and genital orifices is greater in the male (left) compared to the female (right).;Sexing Rat- the distance between the anal and genital orifices is greater in the male (left) compared to the female (right);Slight pressure is applied to the external genitalia to expose the vulva of a female bunny;A female rabbit;第三节 动物的编号、标记及去毛方法 ;编号原则： 先左后右，从前到后。 左前肢记为1号，左侧腹部为2号，左后肢3号，头顶部为4号，腰背部5号，尾基部6号，右前肢7号，右侧腹部8号，右后肢9号。编号超过10时，可使用两种不同颜色的溶液，把一种颜色作为个位数，另一种为十位数。 ;穿耳孔法用专用耳空器在动物耳朵不同部位打一小孔或缺口表示一定号码的方法，原则是：左耳代表十位，右耳代表个位。实验动物：兔、犬、猪 标牌法 一般挂在动物的颈部、耳朵、脚上。实验动物：犬、猴 烙印法 剪毛法; 二、实验动物被毛的去除方法 1.剪毛法 2.拔毛法 3.剃毛法 4.脱毛法 常用的化学药品：硫化钡（BaS）、硫化钠（NaS）、硫化钙（CaS） ;四、动物的麻醉方法 常用的麻醉剂 1.??挥发性麻醉剂:乙醚、氯仿等 2.?非挥发性麻醉剂：苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠等巴比妥类的衍生物，盐酸氯胺酮、水合氯醛等 3.中药麻醉剂：洋金花、东莨菪碱等 ;动物的麻??方法 1．全身麻醉 ①吸入法: ②腹腔和静脉给药麻醉法 2.局部麻醉:盐酸普鲁卡因、盐酸可卡因 ;常用麻醉药的剂量及注射途径;麻醉注意事项: ①静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张性、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，停止注射。 ②麻醉时要注意保温。保温方法有：实验桌内装灯，电褥，台灯照射等 ③作慢性实验时，在寒冷季节，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。 ④注意保持动物的呼吸道的通畅.;;1.小鼠的给药途径和方法 灌胃（i.g）:动物要固定好；头颈部保持平展；要沿着口角进针，再顺着食管方向插入胃内；决不可进针不顺就硬向里插。 皮下注射（s.c）:常选用颈背部皮肤。 ;皮内注射（i.d）:观察皮肤血管的通透性变化及观察皮内反应，多用于接种、致敏实验等。雄性较雌性皮肤紧密，注射难度大。 肌肉注射（i.m）：较少应用 腹腔注射（i.p） 静脉注射（i.v）：一般采用尾静脉注射。小鼠尾部背腹各有一根动脉，两侧各有一根静脉。;2.大鼠的给药途径和方法 灌胃:左手按徒手固定方式固定大鼠,使大鼠伸开两前肢,手掌握住大鼠背。方法与小鼠相同。 皮下注射：常选在左侧下腹部或后腿皮肤处，方法同小鼠。 皮内注射：常选用背部脊柱两侧的皮肤，方法同小鼠。 ;肌肉注射：一般选