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常规实验所用溶液配方大全汇编
常规实验所用溶液配方大全
常规实验所用溶液配方大全 1.0.5mol/LEDTA 配制 组分浓度: 0.5mol/l EDTA, PH=8 配制量:500ml 配制方法(1)称取93.06克EDTA.Na2.2H2O,置于500 ml烧杯中 (2)加入约400ml dd H2O.用热磁力搅拌器充分搅拌 (3)用NaOH调节PH值到8,约用10克固体NaOH (4)在溶液冷却后,再用NaOH调节至PH=8 (5)加dd H2O将溶液定容到500 ml (6)高温高压灭菌后,室温保存 2.NaOH溶液的配制 组分浓度:5 mol/l NaOH 配制量:100 ml 配制方法(1)称取固体NaOH20克于容器中 (2)加入dd H2O定容到100 ml 3.100 mmol/l Tris-HCl的配制 组分浓度: mmol/l Tris-HCl, PH=6.4 配制量:250 ml 配制方法(1)称取3.025克Tris于250 ml烧杯中. (2)加入约200ml dd H2O充分搅拌溶解. (3)用浓盐酸调节PH值到6.4.所用浓盐酸约3 ml (4)将溶液定容至250ml (5)用棕色瓶分装于4度冰箱中 (6)如使用,用水浴加热溶解. 4.氯仿-异戊醇的配制: 配制方法(1)简单的体积混合,既要求比例为24:1即可 (2)储存于棕色玻璃瓶子中 (3)置于4度冰箱以便日后使用 5.去污剂: CTAB:可将细胞膜裂解,使DNA释放到提取液中,同时也使组织匀浆中的蛋白质变性. EDTA:能与DNase的辅助因子Mg2+结合,使DNase失去活性,不能降解从细胞中释放的DNA. 6.还原剂巯基乙醇:它抑制从细胞中释放的多酚氧仿.防止植物组织发黄变褐. 7.氯仿—异戊醇:它可把组织匀浆中变性的蛋白质除去,将DNA与细胞中的蛋白质、碳 水化合物等分开除去. 8.RNase:它可去除核酸中的RNA,只留下DNA. 9.硅珠悬浮液的配制 (1) 称取1.2g硅珠粉,溶解于10ml无菌水中. (2) 放入4℃冰箱备用. (3) 使用时先涡旋使其混合均匀 10. 10×TE,500ml配制如下: 将100mM Tris-Hcl(PH=8.0)6.057g与10mM EDTA(PH=8.0)1.8612g溶于400ddH2O中,调PH=8.0,定容到500ml。 11. 1×TE Buffer 组成浓度:10mM Tris-HCl 1mM EDTA PH=8.0 配制量:500ml 配制方法:量取下列溶液于500ml烧杯中 1M Tris-HCl Buffer PH=8.0 5ml 0.5M EDTA PH=8.0 1ml 向烧杯中加入约400mldd H2O均匀混合;将溶液定容到500ml后,高温高压灭菌;室温保存. 12. 聚丙烯酰胺凝胶电泳PAGE PAGE操作流程及注意事项: 1、涂胶 1)将有耳玻片(耳朝下)泡于反硅化剂中,新液25分钟,旧液30分钟. 2)涂无耳正面玻片硅化剂.均匀点四滴,轻而匀的沿一个方向涂三次,静10分钟. 3)到时间取出.打开通风橱风干30分钟. 2、封胶 1)将两玻片对贴于橡胶框中,放平,用力拧死,夹住橡胶管. 2) 溶废琼脂胶,分两次:第一次50秒,第二次10-20秒,防止沸出. 3) 用小细长枪头通透加胶枪头,便于加样通畅,少起气泡. 4) 吸2500-3000ul液胶加速沿玻片边缘快速顺下滴,将两面玻片充分封死,防止漏胶.以水平底线面水平高于底为佳,静止凝胶15分钟.(有时可先在封口加一点TBE以润滑玻片,利于胶流下) 3、灌胶 1) 用长细枪头透开加胶枪头 2) 从中间加入,每次不要全部打完,留一点在枪头内.防止断流而导致胶中含有气泡. 3) 插梳子时两端平整,梳子紧贴玻板,梳齿头部不可有气泡. 4) 拔梳子时先加一倍TBE液将梳子泡透,然后平行用力拔出. 5) 在插梳子15分钟内跟踪观察,适当下按,保证孔的深度. 6) 等待2小时,以便胶充分凝固. 4、吹孔 1) 向中间槽加入1倍粗制TBE,要淹没过内玻片约1厘米. 2) 拔梳子,小心平稳,均匀平衡. 3)调1000p枪到300-600ul,进行吹孔,将小孔内沉淀物吹打干净,加样中再视时吹5、加样 1) 用细长专用枪加入DNA 0.5ul. 2) 一手托另一臂的肘,以保证加样手不抖. 3) 一定垂直加到孔中去,不脱尾,不吸水,不靠壁,干净利落. 4) 加完一次.在放于桌旁的吸纸上,将细枪头上余液吸干. 5) 首、中、尾各留1到2个孔,两面胶孔的Marker不完全一样,以便区分. 6) 加Marker 0.
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