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附件2:
流感监测实验技术操作规范
一、流感监测临床标本的采集、运送、处理及流感病毒株的运输
(一)流感临床标本的采集
病毒分离成功与否很大程度上取决于临床标本的采集时间、质量及其保存和运输等环节。多数标本取自患者上呼吸道鼻咽腔,其次为气管和支气管分泌物及尸检组织。标本采集后应立即放入适当的采样液中低温保存。
常用的采样液有以下三种:pH7.4~7.6的Hanks、Eagles或者DMEM培养基。为防止采样液生长细菌和真菌,在采样液中可加入抗菌素,加入庆大霉素(终浓度为1mg/mL,Gibco, cat. no. 15750-078)和/或制霉菌素(终浓度为50U/mL)。加入抗菌素以后重新调节pH值至7.4,分装每个采样管3mL,-20℃冻存。常用采样方法有以下几种:
1. 鼻拭子:将带有聚丙烯纤维头的拭子平行于上颚插入鼻孔,旋转,保持数秒,待拭子头吸收分泌物以后,缓慢转动退出。以另一拭子拭另侧鼻孔。将拭子头浸入采样液中,弃去尾部。
2. 咽拭子:用带有聚丙烯纤维头的拭子适度用力擦拭双侧扁桃体及咽后壁,应避免触及舌部。同样将拭子头浸入采样液中,弃去尾部。
注:亦可将鼻、咽拭子收集于同一采样管中,以便提高分离率,减少工作量。
3. 鼻咽抽取物:用与负压泵相连的收集器从鼻咽部抽取粘液。先将收集器头部插入鼻腔,接通负压,旋转收集器头部并缓慢退出。收集抽取的粘液,并用3~5mL采样液涮洗收集器3次。
此外,对于尸检组织,必要时采集尸检的肺组织标本进行病毒分离。
(二)临床标本运输
新鲜采集的临床标本应在4℃条件下48h内运送至流感监测网络实验室。未能48h内送至实验室的,应置-70℃或以下保存。标本送至实验室后,应尽快进行相应实验室检测,48h内能进行检测的可置于4℃保存,否则应置-70℃或以下保存。
冻存的临床采集标本应在冻存的条件下,低温送至实验室。冻存的标本送到实验室后,应尽快进行相应实验室检测,48h内能进行检测的可置于4℃保存,否则应置-70℃或以下保存。标本应避免反复冻融。
临床标本采集管建议使用带螺口的塑料管。运输时在包装箱内填充吸水材料,运输过程中保持标本采集管直立状态,不能倾斜。
(三)临床标本处理
临床采集标本送至实验室后,须经处理后再进行病毒的分离接种。若为带有聚丙烯纤维的拭子标本,应先将带有聚丙烯纤维的拭子在管壁反复挤压后取出。
鼻咽抽取液:用干净灭菌的毛细吸管在无菌条件下反复吹打收集的溶液,以便打碎粘液,置4℃待其自然沉淀5~10min,取上清。上清液可直接接种或低温保存。
组织标本的处理:取肺组织标本放至平皿中,用灭菌生理盐水清洗肺组织2~3遍,研磨成组织悬液,配置成10%~20%的组织悬液,2000rpm离心10min,加入抗菌素,取上清直接接种。
注:如原始采样液中未加入抗菌素,应在标本接种前补加,庆大霉素终浓度为10mg/mL,青/链霉素(终浓度:青霉素G 100U/mL,硫酸链霉素100μg/mL),混匀后置4℃过夜或作用2h后进行接种。
临床标本处理后,将原始标本分为三份,一份用于鸡胚接种,一份用于MDCK细胞接种,一份保存待复核用。对于病毒分离阳性的原始标本-70℃至少保存6个月,在收到国家流感中心复核鉴定报告后,按照生物安全有关规定处理;病毒分离阴性的标本随时按生物安全的有关规定处理。
(四)血清标本的采集、处理、运输和保存
血清标本多用于流感暴发时的血清学核实诊断。血清标本采集应该包括急性期和恢复期双份血清,单份血清不能用作诊断。急性期血样应尽早采集,可在采集病毒分离标本的同时采集,但不能晚于发病后7天。恢复期血样则在发病后2~4周采集。一般采集空腹血。
1. 取一根体积5mL以上,无菌的血清管做好标记,并进行登记。登记的内容包括:医院名称、患者姓名、性别、急性期(Acute,A)或是恢复期(Convalescence,C)、采样日期(年,月,日)。
2. 从患者手臂静脉采5mL血,放入准备好的上述血清管中。
3. 放置于室温数小时待血液完全凝固。
4. 1500~2000rpm离心10min,收集血清于无菌管中,做好标记。
5. 无菌条件下采集的血清可置4℃存放1周,非无菌条件下采集的或存放超过1周的血清需置-20℃或以下保存。应尽量避免反复冻融。
(五)流感病毒株的运输
需送国家流感中心实验室检测的流感毒株,在流感监测信息系统填写“流感毒株送检单”,提交并打印送检单,加盖单位公章。在冻存后,低温条件下,送至国家流感中心进行复核检测,运输时应遵守国家生物安全的有关规定。
1. 流感毒株的送检要求
(1)流感样病例标本
各网络实验室对所有血凝滴度≥1:16的流感毒株,同时分别上送国家流感中心和省级疾病预防控制中心,送检量每份不少于3mL。各网络实验室分离的毒株从标本采
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