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(一)E.coli作为表达外源基因受体菌的特征 (二)外源基因在E.coli中高效表达的原理 (三)大肠杆菌基因工程菌的构建策略 (四)基因工程菌的遗传不稳定性及对策 (六)利用重组大肠杆菌生产人胰岛素 胰岛素的结构及其生物合成 人胰岛素的生产方法 重组人胰岛素的大肠杆菌工程菌的构建 胰岛素的结构及其生物合成 信号肽 B肽 C肽 A肽 N C 前胰岛素原 信号肽酶 B肽 C肽 A肽 S S S S S S C N 胰岛素原 特异性肽酶 S S S S S S N N C C B肽 A肽 成熟胰岛素 1969 Crowfoot-Hodgkin确定了胰岛素的空间结构; 1979 Rutter W和Doodman H克隆了胰岛素基因; 加拿大科学家Frederick Banting和John James Richard Macleod发现胰岛素 Nobel Prize in Physiology and Medicine, 1923 1923 Banting和Macleod发现了胰岛素; 英国生物化学家Frederick Sanger 测定了胰岛素序列 Nobel Prize in Chemistry, 1958 1955 Sanger首次报道了胰岛素的氨基酸序列; Lilly公司获美国FDA许可,将重组人胰岛素 推向市场 2006 辉瑞公司的胰岛素吸入剂(Exubera)获准上市 ---第一个非注射给药的胰岛素剂型? 人胰岛素的生产方法 迄今,有四种大规模生产人胰岛素的方法: 1)直接提取法: 从人的胰脏中直接分离纯化,受原料供应限制,产量远不能满足临床需求。 融合蛋白的位点专一性断裂方法: 化学断裂法 酶促裂解法 蛋白位点专一性化学断裂的最佳试剂为溴化氰(CNBr),与多肽链中甲硫氨酸残基侧链的硫醚基反应,生成溴化亚氨内酯,后者在水的作用下肽键断裂,形成两个肽段,上游肽段的甲硫氨酸残基转化为高丝氨酸残基,下游肽段N端的第一个氨基酸残基保持不变。 化学断裂法 特点: 前提: 回收率高(达85%以上);专一性强;产生的目的蛋白N端不含甲硫氨酸,与真核生物中的成熟表达产物接近。 目的蛋白分子内部不能含甲硫氨酸残基。 酶促裂解法-单残基位点 蛋白内切酶 切割位点 梭菌蛋白酶 Arg 葡萄球菌蛋白酶 Glu 假单孢菌蛋白酶 Lys 猪胰蛋白酶 Arg Lys 特点: N C Arg C N 受体蛋白 目的蛋白 1)断裂效率高。 2)每种蛋白酶都有相应的断裂位点。几种断裂位点专一性最强的商品化蛋白酶分别在多肽链中Arg、Glu或Lys残基C末端切开酰胺键,形成不含上述残基的下游肽段。 前提: 外源蛋白内部不能含Arg、Glu或Lys残基。 大分子外源蛋白内部,这3种氨基酸残基出现的频率相当高。 ---应用局限。 问题: 酶促裂解法--多残基位点 在受体蛋白编码序列与外源基因之间加装一段寡肽编码序列(Ile异亮氨酸-Glu-Gly甘氨酸-Arg),该寡肽为具蛋白酶活性的凝血因子Xa的识别和作用序列,其断裂位点在Arg的C末端。 纯化后的融合蛋白用Xa处理,即可获得不含上述寡肽序列的目的蛋白。 凝血因子Xa的识别序列由4个氨基酸残基(Ile-Glu-Gly-Arg)组成,大多数蛋白质中出现这种寡肽序列的概率极低。 ---应用广泛。 酶促裂解法: P 受体基因 接头 目的基因 Arg Lys Glu Ile-Glu-Gly-Arg 表达 亲和层析 Arg Lys Glu Ile-Glu-gly-Arg 酶解回收 4、寡聚型表达 通过增加质粒拷贝数,以提高外源蛋白产量往往不能取得满意效果。 随质粒拷贝数不断增加,受体细胞内的大部分能量和原料被用于合成质粒编码蛋白,使细胞正常生长代谢受到影响。 重组质粒除含外源基因外,还携带其它可转录基因(如抗生素抗性基因)。 构建寡聚串联型异源蛋白表达载体,将多拷贝外源基因克隆在一个低拷贝质粒上,以取代单拷贝外源基因在高拷贝载体上表达,可增加外源基因剂量,提高目标蛋白产量。 寡聚型表达的优点: 1)目的蛋白高效表达: 在不提高质粒拷贝数的前提下,增加目的基
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