实验2-设计性实验-不同限制性内切酶对质粒切割-指导.doc

实验二 不同限制性核酸内切酶对质粒DNA 的切割 （设计性实验） 设计实验目的：培养学生独立完成实验设计、实验操作和撰写小论文的能力。 设计实验要求：选用1或2种内切酶，将所提供的质粒DNA切割为至少3-4个以上的片段。 设计实验过程：学生根据实验要求，运用学过的知识，先设计实验方案，提交老师批阅认可；再独立进行实验准备和实验；实验结束，撰写设计性实验报告，即小论文1篇。小论文要求：字数不少于3000，包括论文题目、作者、摘要、关键词、引言、材料与方法、结果与分析、结论或讨论、参考文献等。 设计实验涉及知识点：1）质粒的限制性内切酶图谱；2）质粒酶切鉴定；3）DNA片段的琼脂糖凝胶电泳。 设计实验要求学生独立撰写小论文。 Digestion of plasmid DNA with different restriction endonuclease 不同限制性核酸内切酶对质粒DNA的切割 一、 原理　　限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上,并切割双链DNA。它可分为三类:Ⅰ类和Ⅲ类酶在同一蛋白质分子中兼有切割和修饰(甲基化)作用且依赖于ATP的存在。Ⅰ类酶结合于识别位点并随机的切割识别位点不远处的DNA，而Ⅲ类酶在识别位点上切割DNA分子, 然后从底物上解离。Ⅱ类由两种酶组成: 一种为限制性内切核酸酶(限制酶),它切割某一特异的核苷酸序列; 另一种为独立的甲基化酶, 它修饰同一识别序列。Ⅱ类中的限制性内切酶在分子克隆中得到了广泛应用，它们是重组DNA的基础。绝大多数Ⅱ类限制酶识别长度为4至6个核苷酸的回文对称特异核苷酸序列(如EcoRⅠ识别六个核苷酸序列:5- G↓AATTC-3),有少数酶识别更长的序列或简并序列。Ⅱ类酶切割位点在识别序列中,有的在对称轴处切割,产生平末端的DNA片段(如SmaⅠ:5-CCC↓GGG-3);有的切割位点在对称轴一侧,产生带有单链突出末端的DNA片段称粘性未端, 如EcoRⅠ切割识别序列后产生两个互补的粘性末端。 　　5…G↓AATTC …3 →5… G AATTC…3 　　3…CTTAA↑G …5 →3… CTTAA G…5 　　大部分限制性内切酶不受RNA或单链DNA的影响。当微量的污染物进入限制性内切酶贮存液中时, 会影响其进一步使用,因此在吸取限制性内切酶时, 每次都要用新的吸管头。如果采用两种限制性内切酶, 必须要注意分别提供各自的最适盐浓度。若两者可用同一缓冲液,则可同时水解。若需要不同的盐浓度, 则低盐浓度的限制性内切酶必须首先使用, 随后调节盐浓度,再用高盐浓度的限制性内切酶水解。也可在第一个酶切反应完成后，用等体积酚/氯仿抽提，加0.1倍体积3mol/L NaAc和2倍体积无水乙醇，混匀后置-70℃低温冰箱30分钟，离心、干燥并重新溶于缓冲液后进行第二个酶切反应。 　　DNA限制性内切酶酶切图谱又称DNA的物理图谱，它由一系列位置确定的多种限制性内切酶酶切位点组成，以直线或环状图式表示。本实验采用重组质粒pUC19-P35S:ARF8，其物理图谱如图1所示。 图1 重组质粒pUC19-P35S:ARF8 with Cutting sites of restriction enzymes 　　在酶切过程中，为了获得条带清晰的电泳图谱，一般DNA用量约为0.5-1μg。限制性内切酶的酶解反应最适条件各不相同, 各种酶有其相应的酶切缓冲液和最适反应温度(大多数为37℃)。对质粒DNA酶切反应而言, 限制性内切酶用量可按标准体系1μg DNA加1单位酶,消化1-2小时。但要完全酶解则必须增加酶的用量, 一般增加2-3倍, 甚至更多,反应时间也要适当延长。 　　DNA经限制性内切后得到不同大小的片段，可用琼脂糖或聚丙烯酰胺凝胶电泳加以分离，对照分子量标样加以鉴定。 二、材料、设备、试剂 材料 1、重组质粒pUC19-P35S:ARF8由本实验室构建（图1）； 2、限制性内切酶：Pvu II、Hind III、Sph I、Pst I、Xba I、EcoR I、Pvu I、EcoR V等购自TaKaRa等生物工程公司； 3、琼脂糖(Agarose): 进口分装。 设备 　　水平式电泳装置, 电泳仪, 台式高速离心机, 恒温水浴锅, 微量移液枪, 微波炉或电炉,凝胶成像系统等。 试剂 　　1、 5×TBE电泳缓冲液； 　　2、 6×电泳载样缓冲液：0.25％ 溴粉蓝，40％(w/v) 蔗糖水溶液，贮存于 4℃； 　　3、 溴化乙锭(EB)溶液母液:将EB配制成10mg/ml,用铝箔或黑纸包裹容器,储于 室温即可； 4、DNA分子量标准：从小到大为100bp、25bp、500bp、750bp、1000bp