多糖的提取和纯化.docVIP

多糖的提取和纯化 目前，真菌多糖的提取可从子实体和采用深层培养发酵液的菌丝中分离获得，但以从子实体中提取多糖为主。首先是将子实体粉碎，加入甲醇或乙醇乙醚1:1混合液，水浴加热搅拌1一3小时除去表面脂肪。其次是用残渣提取多糖，常用的方法有不同温度下的水提法、稀酸提法、冷热稀碱提法。水提法采用的较多，适合于提取水溶性多糖。稀酸提取法适用于提取酸溶性多糖、时间宜短，温度不超过50℃，以防止糖昔键断裂。稀碱法适合于提取碱溶性糖。然后除去小分子杂质，常采用透析法，将多糖提取液置于半透膜透析袋中，逆向流水透析1一3天。第四步是沉淀多糖。大部分多糖在有机溶剂中的溶解度极小，所以可用有机溶剂来沉淀。常用4一5倍低级醇、丙酮，一般在pH=7.0左右沉淀多糖，制得粗多糖。最后是除去蛋白质。除去多糖中的蛋白质常用的方法是三氯醋酸法。得到的溶液基本上是没有蛋白质与小分子杂质的多糖混合物或单一多糖。 多糖的纯化是将多糖混合物分离为单一的多糖。纯化方法很多，主要纯化方法有:(l)分步沉淀法根据不同多糖在不同浓度的低级醇或酮中具有不同溶解度的性质，逐次按比例由小而大加入这些醇或酮分步沉淀。此法适用于分离各种溶解度相差较大的多糖。(2)盐析法根据不同多糖在不同浓度盐中具有不同溶解度而分离。 纯度鉴定和分子量测定多糖纯度标准不能用通常化合物纯度标准来衡量，因为我们所说的多糖纯品实质上是一定分子量范围内的均一组成。因此，测得的分子量一般为平均分子量。过去常用粘度法、蒸气压渗透计法、沉降法、超速离心法、光散射法等测定高分子化合物分子量的方法测定真菌多糖的分子量，但由于这些方法测定起来比较麻烦，且误差较大，现多数已不采用。目前实验室常用的方法为凝胶过滤法和高压液相色谱法，对于分子量小于1百万的多糖用高压液相法为最好。 1.2.1发酵、提取 取香菇465菌株斜面菌种接人摇瓶培养基中振荡培养，逐级扩大培养至10O0L，25℃下通 气培养72h，压滤，得香菇深层培养菌丝体。 上述菌丝体经水洗涤后，用3倍量热水(90一100℃)浸取3h，浸取液经浓缩加3倍量95肠乙 醇，离心得乙醇沉淀物一Le[‘’。 1.2。2分离、纯化 取Le上样于DEAE一纤维素柱上，用O。Olmol/L pH 6.95 Tris-HCI缓冲液洗脱，洗脱液分 部收集，分别用UV(280nm)和酚硫酸法测定其吸收值(A值)，合并吸收峰重叠的洗脱液，经浓 缩、透析、冻干得淡黄色絮状物Le一2· Le一2进一步用DEAE一纤维素(DE52型)分离，先用pH7.8的0.oosmol/L硼酸缓冲液洗脱， 后用含lmol/L NaCI的o.Zmol/L硼酸缓冲液洗脱.各洗脱液按上法用UV230nm和酚硫酸法 检测，分别收集既含肤又含糖的洗脱液.用o.005mol/L硼酸缓冲液洗脱的组分为Le一2一1，用含 lmol/L NaCI的硼酸缓冲液洗脱的组分称Le一2一2o 1.2.3鉴定 1.2.3.1纯度 (l)HPLC法 将样品配成1%浓度后进样.进样量20召L。流动相:0.002mol/L NaAc;流 速:0.6ml/min。记录色谱曲线和样品保留时间(Tr)。 (2)醋酸纤维薄膜电泳 缓冲液:pH8.6巴比妥缓冲液.电压12OV，25min.阿利新蓝法 染色. 1·2·3.2分子量测定 用T系列标准葡聚糖(T-40:44，400 Da；T-70：85，000 Da；T-110:110，000 Da;T-500:450，000 Da)上HPLC柱，测出保留时间后对分子量对数作出标准曲线.然后根据样品的保留时间，从标 准曲线上求出样品分子量。 1.2。3.3单糖组成 (l)薄层层析将Le一2一1及Le-2一2分别用三氟醋酸在110℃下水解4h.蒸去三氟醋酸并蒸 干，用3ml水溶解后点样。层析板:醋酸纤维素层析板(DC一Aufolien CelluloseF。);展开剂:正 丁醇(BuOH):毗唆(Py):水(HZO)二6:4‘3;显色剂:苯胺一邻苯二甲酸. (2)气相色谱取上述水解液加IOmg NaBH。在室温下还原Zh，用冰醋酸调pH至5，减压蒸 干后加lml乙酸配，100℃水浴lh，进行乙酞化处理，将乙酸化产物的氯仿抽提液作气相色谱分 析，柱温205℃，气化温度250℃。 1‘3.1多糖的分离、纯化将长裙竹荪子实体干品洗净、剪碎，用5倍的3%三氯乙酸溶液于 5℃提取8h，离心，收集上清液，用4N NaOH溶液中和上清液至pH7，浓缩、离心，上清液加3倍 体积的95%乙醇沉淀，收集沉淀物，冷冻干燥得粗多糖，得率约为8%.粗多糖含蛋白质较多，采 用蛋白酶法脱蛋白一次，Sevag法脱蛋白5次，去蛋